對于比較普遍的蛋白質(zhì)檢測我們匯總了大家的問題,進行答疑:
一、當(dāng)測定的樣品是液體時,也是稱取質(zhì)量嗎?
樣品取體積還是稱質(zhì)量要看執(zhí)行標(biāo)準(zhǔn)中的限量單位。如果限量單位是體積則取體積,是質(zhì)量則稱質(zhì)量。
二、測定液體時稱樣量能不能減少到5g?
主要看樣品的蛋白質(zhì)含量,控制稱取的樣品含氮量在30mg~40mg是比較合理的。
三、玉米淀粉的稱樣量是多少?
玉米淀粉中蛋白質(zhì)含量很低,滴定法更適用于蛋白質(zhì)含量為常量的樣品,不適合這種微量樣品的檢測。
四、消化過程中硫酸銅、硫酸鉀加多加少有影響嗎?
催化劑的添加量要求不是特別嚴(yán)格,其添加量稍有偏差對結(jié)果的影響不大,但不要過多或過少。
五、全自動凱氏定氮儀測定蛋白質(zhì)怎樣才能消化完全?
控制樣品稱樣量在合理范圍。原則上樣品越少,越容易消化,但樣品量太少計量的誤差會變大。所以要控制稱取的樣品量使其含氮量在30mg~40mg是比較合理的。
消化劑的添加要足夠。比如在硫酸不足的情況下,過多的硫酸鉀會形成硫酸氫鉀而不與氨作用,因此當(dāng)硫酸過多被消耗或樣品中脂肪含量過高時,可適度增加硫酸的量。
六、自動凱氏定氮法中指示劑甲基紅和溴甲酚綠是1:5的配比,配比稍有變化影響大嗎?
國標(biāo)中給的兩種指示劑,其中B指示劑的配比是甲基紅乙醇溶液與溴甲酚綠乙醇溶液的配比為1:5。指示劑的比例不同,顏色會有變化,對結(jié)果影響不大,主要配合試劑空白的顏色反應(yīng)來看反應(yīng)結(jié)果。
七、自動凱氏定氮和凱氏定氮是不是用的氫氧化鈉溶液濃度不一樣?
一樣的,都是使用400g/L的氫氧化鈉溶液。
八、蒸餾過程中,火力控制在多大?
能保證液體沸騰,且產(chǎn)生的蒸汽充足、均勻即可。
九、蒸餾過程中,總是倒流怎么辦?
要保證蒸餾裝置不漏氣,使用前進行裝置的檢漏。
蒸餾時,要保證蒸汽均勻、充足,中間不能停止加熱或減小火力,防止產(chǎn)生倒吸。
蒸餾完畢后先將冷凝管下端提離頁面,蒸餾1min后取下接收瓶,最后關(guān)掉熱源,否則可能會發(fā)生倒吸。
十、蒸餾過程中,反應(yīng)液為什么跑到反應(yīng)室外層?
當(dāng)熱源不夠穩(wěn)定,提供的蒸汽不均勻時會導(dǎo)致此現(xiàn)象的產(chǎn)生。比如停火或者加熱的溫度降低時,由于反應(yīng)室外層的壓力突然降低,可使液體吸入反應(yīng)室外層,所以操作時一定要保證加熱產(chǎn)生的蒸汽充足、均勻。
十一、加了指示劑的硼酸可以保存多久?
混合指示劑需要臨用現(xiàn)配,不建議長期保存。
十二、含乳飲料的蛋白質(zhì)折算系數(shù)用哪個?
含乳飲料的蛋白質(zhì)折算系數(shù)要看飲料中的蛋白質(zhì)來源,如果來源僅為純?nèi)榛蚣內(nèi)橹破,則蛋白質(zhì)用6.38。如果飲料中蛋白質(zhì)來源較多用6.25。
十三、蛋白質(zhì)測定偏低的原因?蛋白質(zhì)的稱樣量過多會導(dǎo)致蛋白質(zhì)偏低嗎?
導(dǎo)致蛋白質(zhì)測定偏低的原因較多:樣品消化不完全、裝置漏氣導(dǎo)致氨的溢出、操作不當(dāng)、稱樣量不合理等均會導(dǎo)致結(jié)果偏低。
稱樣量過多會造成結(jié)果偏低。主要還是要看樣品,提前預(yù)估蛋白質(zhì)含量,從而掌握合理的稱樣量。一般控制蛋白質(zhì)含量在0.2g左右,加入0.4g硫酸銅、6g硫酸鉀及20mL濃硫酸是比較合理的消化方法。
十四、怎么驗證蛋白質(zhì)測定的準(zhǔn)確性?
檢查精密度,平行樣的絕對差值不超過算數(shù)平均值的10%。
也可以通過儀器比對、人員比對、留樣再測、加標(biāo)回收等方式驗證結(jié)果的準(zhǔn)確性。
文章內(nèi)容來源食品儀器分析。轉(zhuǎn)載只為分享知識,如有侵權(quán)請聯(lián)系刪除。
一、當(dāng)測定的樣品是液體時,也是稱取質(zhì)量嗎?
樣品取體積還是稱質(zhì)量要看執(zhí)行標(biāo)準(zhǔn)中的限量單位。如果限量單位是體積則取體積,是質(zhì)量則稱質(zhì)量。
二、測定液體時稱樣量能不能減少到5g?
主要看樣品的蛋白質(zhì)含量,控制稱取的樣品含氮量在30mg~40mg是比較合理的。
三、玉米淀粉的稱樣量是多少?
玉米淀粉中蛋白質(zhì)含量很低,滴定法更適用于蛋白質(zhì)含量為常量的樣品,不適合這種微量樣品的檢測。
四、消化過程中硫酸銅、硫酸鉀加多加少有影響嗎?
催化劑的添加量要求不是特別嚴(yán)格,其添加量稍有偏差對結(jié)果的影響不大,但不要過多或過少。
五、全自動凱氏定氮儀測定蛋白質(zhì)怎樣才能消化完全?
控制樣品稱樣量在合理范圍。原則上樣品越少,越容易消化,但樣品量太少計量的誤差會變大。所以要控制稱取的樣品量使其含氮量在30mg~40mg是比較合理的。
消化劑的添加要足夠。比如在硫酸不足的情況下,過多的硫酸鉀會形成硫酸氫鉀而不與氨作用,因此當(dāng)硫酸過多被消耗或樣品中脂肪含量過高時,可適度增加硫酸的量。
六、自動凱氏定氮法中指示劑甲基紅和溴甲酚綠是1:5的配比,配比稍有變化影響大嗎?
國標(biāo)中給的兩種指示劑,其中B指示劑的配比是甲基紅乙醇溶液與溴甲酚綠乙醇溶液的配比為1:5。指示劑的比例不同,顏色會有變化,對結(jié)果影響不大,主要配合試劑空白的顏色反應(yīng)來看反應(yīng)結(jié)果。
七、自動凱氏定氮和凱氏定氮是不是用的氫氧化鈉溶液濃度不一樣?
一樣的,都是使用400g/L的氫氧化鈉溶液。
八、蒸餾過程中,火力控制在多大?
能保證液體沸騰,且產(chǎn)生的蒸汽充足、均勻即可。
九、蒸餾過程中,總是倒流怎么辦?
要保證蒸餾裝置不漏氣,使用前進行裝置的檢漏。
蒸餾時,要保證蒸汽均勻、充足,中間不能停止加熱或減小火力,防止產(chǎn)生倒吸。
蒸餾完畢后先將冷凝管下端提離頁面,蒸餾1min后取下接收瓶,最后關(guān)掉熱源,否則可能會發(fā)生倒吸。
十、蒸餾過程中,反應(yīng)液為什么跑到反應(yīng)室外層?
當(dāng)熱源不夠穩(wěn)定,提供的蒸汽不均勻時會導(dǎo)致此現(xiàn)象的產(chǎn)生。比如停火或者加熱的溫度降低時,由于反應(yīng)室外層的壓力突然降低,可使液體吸入反應(yīng)室外層,所以操作時一定要保證加熱產(chǎn)生的蒸汽充足、均勻。
十一、加了指示劑的硼酸可以保存多久?
混合指示劑需要臨用現(xiàn)配,不建議長期保存。
十二、含乳飲料的蛋白質(zhì)折算系數(shù)用哪個?
含乳飲料的蛋白質(zhì)折算系數(shù)要看飲料中的蛋白質(zhì)來源,如果來源僅為純?nèi)榛蚣內(nèi)橹破,則蛋白質(zhì)用6.38。如果飲料中蛋白質(zhì)來源較多用6.25。
十三、蛋白質(zhì)測定偏低的原因?蛋白質(zhì)的稱樣量過多會導(dǎo)致蛋白質(zhì)偏低嗎?
導(dǎo)致蛋白質(zhì)測定偏低的原因較多:樣品消化不完全、裝置漏氣導(dǎo)致氨的溢出、操作不當(dāng)、稱樣量不合理等均會導(dǎo)致結(jié)果偏低。
稱樣量過多會造成結(jié)果偏低。主要還是要看樣品,提前預(yù)估蛋白質(zhì)含量,從而掌握合理的稱樣量。一般控制蛋白質(zhì)含量在0.2g左右,加入0.4g硫酸銅、6g硫酸鉀及20mL濃硫酸是比較合理的消化方法。
十四、怎么驗證蛋白質(zhì)測定的準(zhǔn)確性?
檢查精密度,平行樣的絕對差值不超過算數(shù)平均值的10%。
也可以通過儀器比對、人員比對、留樣再測、加標(biāo)回收等方式驗證結(jié)果的準(zhǔn)確性。
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